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作者:康潤生物
發(fā)布時間:2022-12-12
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無縫克隆是一種新型基因克隆技術(shù),它可以同時將1到多個片段高效的插入到任何載體。目前應(yīng)用較廣泛的無縫克隆方法是Gibson Assembly和In-Fusion Cloning。這兩種方法的在原理上非常相似:都是通過外切酶產(chǎn)生黏性末端、然后利用體內(nèi)或體外重組酶進(jìn)行連接,得到重組片段;但兩者用到的酶卻完全不同。我們一起來了解無縫克隆的秘密。

 

Gibson Assembly原理

Gibson Assembly是由Daniel Gibson和J.Craig Venter在2009年提出的。Gibson Assembly要求目的片段與線性化載體首尾具有一段互補(bǔ)重疊的同源臂序列;利用T5 exonuclease的5’一3’外切酶活性產(chǎn)生3’黏性末端,之后同源臂進(jìn)行互補(bǔ)配對,再利用DNA polymerase延伸補(bǔ)齊片段上的缺口部分,最后通過Taq DNA Ligase連接DNA片段中的缺刻,完成克隆組裝。

 

Gibson Assembly原理示意圖

 

In-Fusion Cloning原理

In-Fusion Cloning利用了In-Fusion酶能夠識別3’末端堿基,具有3’→5’外切酶活性的特點(diǎn)。通過In-Fusion酶產(chǎn)生5’黏性末端,互補(bǔ)重疊片段退火配對;再將重組片段轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細(xì)胞內(nèi),重組片段序列中的缺刻在菌體內(nèi)進(jìn)行連接,獲得重組序列。

 

 

210711.jpg

In-Fusion Cloning原理示意圖

 

無縫克隆的優(yōu)勢

傳統(tǒng)的分子克隆技術(shù)依賴于Ⅱ型限制性內(nèi)切酶和T4 DNA連接酶的使用,DNA片段與載體經(jīng)相同的限制性內(nèi)切酶切割產(chǎn)生相同的末端,然后利用T4 DNA連接酶反應(yīng)實(shí)現(xiàn)片段融合。這種方法受到酶切位點(diǎn)限制,需選擇片段與載體序列內(nèi)部沒有、而僅在載體多克隆位點(diǎn)存在的酶切位點(diǎn)。酶切連接的方法一次只能連接單個片段,無法實(shí)現(xiàn)多片段同時連接。且該方法中T4 DNA連接酶的輔助因子ATP易失活,影響克隆效率。無縫克隆與傳統(tǒng)的酶切連接相比,具有以下優(yōu)勢:

 

  • 不受酶切位點(diǎn)限制

  • 適用于任意載體、任意片段

  • 一步連接1或多個片段,連接多片段耗時短

  • 插入目的片段兩端不會添加額外序列(如保護(hù)堿基)

 

無縫克隆實(shí)驗(yàn)關(guān)鍵影響因素

自無縫克隆技術(shù)被大家認(rèn)識后,得到了眾多老師的青睞,但同時也有部分質(zhì)疑:連接效率為何總是不盡如人意?我們來細(xì)數(shù)影響無縫克隆實(shí)驗(yàn)的關(guān)鍵因素有哪些?

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無縫克隆實(shí)驗(yàn)流程

 

片段質(zhì)量

  • 確保DNA片段無核酸酶及其它酶污染、無乙醇等殘留;

  • 純度正常:A260/A280值在1.6-1.9、A260/230值在2左右、紫外吸收峰圖正常;

  • 濃度正常:插入片段與線性化載體濃度高于50 ng/μl,會使重組效率提高;

  • 若模板濃度低、純度低,則連接效率降低。

 

載體線性化方法

線性化載體可以選擇反向PCR或酶切的方法:

  • 可根據(jù)在載體插入位置是否有合適的酶切位點(diǎn)選擇具體方法。因Gibson Assembly反應(yīng)體系內(nèi)無雙鏈DNA連接酶,不會發(fā)生載體自連,線性化載體不需要進(jìn)行末端去磷酸化處理。酶切制備線性化載體建議使用雙酶切,且酶切后采用膠回收的方法回收產(chǎn)物,這樣利于降低假陽性。

  • 若沒有合適酶切位點(diǎn)或者多次酶切制備線性化載體均不成功,可以選擇反向PCR擴(kuò)增,但不適合較大質(zhì)粒,如超過8 kb。

 

引物設(shè)計(jì)

  • 目的片段引物設(shè)計(jì):目的片段引物是由目的片段兩端序列加同源臂序列組成,同源臂長度設(shè)置在16-45 bp,Tm值在58–65°C。同源臂越長,有利于重組置換,但可能會影響目的片段擴(kuò)增;

  • 載體引物設(shè)計(jì):確定目的片段插入位置,推薦借助Snapgene軟件設(shè)計(jì)反向PCR引物。

 

PCR擴(kuò)增

  • 反向PCR制備線性化載體及擴(kuò)增目的片段時需要使用高保真酶;

  • 制備線性化載體后使用Dpn I內(nèi)切酶消化環(huán)狀質(zhì)粒模板,降低假陽性克隆。

 

插入片段與線性化載體摩爾比

  • 10 µl 反應(yīng)體系,載體與插入片段總加入量建議在 0.01-0.3 pmol。插入片段與線性化載體的最佳摩爾比為 1:1-4:1;片段與片段的摩爾比為1:1。

  • 推薦使用GenStar 克隆連接反應(yīng)體系計(jì)算工具,快速計(jì)算載體與目的片段使用量。

 

感受態(tài)轉(zhuǎn)化效率

  • 插入片段與載體全長超過10 kb,屬于長片段克隆,應(yīng)使用高效感受態(tài);如:轉(zhuǎn)化效率大于108 cfu/μg DNA的感受態(tài)細(xì)胞。

  • 感受態(tài)細(xì)胞與重組質(zhì)粒用量比例不小于10:1。

     

只要注意以上幾點(diǎn),高效無縫克隆實(shí)驗(yàn)輕松get。

 

什么?不清楚無縫克隆實(shí)驗(yàn)具體怎樣操作?

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